脂肪切片的染色方法

2026-04-03 14:55

脂肪切片染色方法详解

一、脂肪染色的重要性和常用染料

在医学和生物学研究中,脂肪切片的染色是一项关键技术。它能够帮助我们观察和分析组织中的脂肪分布、含量以及形态变化,对于疾病的诊断、发病机制的研究等都具有重要意义。常用的脂肪染色染料有苏丹染料(如苏丹Ⅱ、苏丹Ⅲ、苏丹Ⅳ)、油红O等。这些染料都是脂溶性的,它们既能溶于有机溶剂如乙醇、丙酮内,又能溶于脂肪内。由于该类染料在脂质中溶解度较大,染色时染料便从染液中转移到被染的脂质中去,使脂质呈现染液的颜色。

二、苏丹Ⅳ染色法

试剂配制

甘油明胶的配制:先将明胶溶于蒸馏水,置于37℃的温箱或水浴箱中一晚使其完全溶解,期间可稍微摇动,然后加入甘油和苯酚结晶,再转入37℃的温箱30分钟,使彻底溶解并混匀即可用。该液于室温呈冻胶状,可保存使用1 - 2年,用前置于37℃的温箱或温水内待溶解后即可行冷冻切片的脂肪染色封盖。苏丹Ⅳ染液可将1 - 2克猩红染剂加纯酒精70ml,10%氢氧化钠20ml,蒸馏水10ml,制成混合液,以微火加热,置37℃温箱中1小时,取出冷却后过滤,12小时后即可使用。不过此液5天内失效,也可配制70%酒精饱和液,或纯丙酮和70%酒精饱和液,它们使用方便,且不易失效。

染色步骤

  1. 新鲜组织低温恒冷切片,根据组织内所含脂肪的多少,切片温度可调解在 - 20℃~ - 25℃,若为脂肪瘤,宜调至 - 30℃。切片厚6~8um,裱贴于玻片。
  2. 70%的乙醇稍浸洗。
  3. 苏丹Ⅳ染液浸染1分钟。
  4. 70%的乙醇洗去多余染液。
  5. 蒸馏水浸洗1分钟。
  6. Mayer苏木精染胞核2分钟。
  7. 水洗10分钟,再用蒸馏水洗1次。
  8. 用滤纸把组织周围水分抹干。
  9. 甘油明胶封盖。

结果

中性脂肪呈红色(用苏丹Ⅳ染液),胞核呈蓝色。

注意事项

  1. 如已经用10%的甲醛液固定的组织作脂肪染色,则不易用低温恒冷切片机切片,需采用半导体制冷切片,厚8~10um,置于一小缸蒸馏水内展开,用玻璃钩把切片捞入70%的乙醇内稍洗,跟着捞入苏丹Ⅳ染液染1分钟,再捞出移入70%的乙醇漂洗,后续按正常步骤操作,全过程用捞片染色,至最后用玻璃钩把切片捞在载玻片上,抹干周围水分,用甘油明胶封盖。
  2. 用甘油明胶封盖的标本,保存时间不长。如需较长时间保持,可在盖玻片的四周与载玻片交界处用中性树胶作一堤围状封固,堤围宽度约2~3mm,但在滴甘油明胶时以不溢出盖玻片边缘为准。
  3. 苏丹Ⅳ属偶氮类燃料,不溶于水,稍溶于脂溶剂,易溶于脂肪。它的分子结构比苏丹Ⅲ多两个甲基。可用苏丹Ⅱ或苏丹Ⅲ代替苏丹Ⅳ,染色结果分别呈橙黄色至橙红色或橙红色。
  4. 苏丹类染料除用等份70%的乙醇和丙酮混合液外,也可用异丙醇、乙二醇或仅用70%的乙醇作为溶剂。用乙醇丙酮作为溶剂配制的染液溶解度大些,但也会溶脱微小滴状脂质。
  5. 凡作脂肪染色的组织都不能采用含乙醇的固定液固定,而必须用甲醛液固定,不能作石蜡切片而须作冷冻切片或石蜡切片。
  6. 配制苏丹染液的溶剂都是脂溶剂,有挥发性,配好后的染液一定要密封保存,用前才吸出小量置于有盖的小玻璃皿内进行染色,否则染液易发生沉淀,造成切片污染。
  7. 用苏丹Ⅳ 0.3g,苏丹Ⅲ 0.2g溶于等份70%的乙醇和丙酮各50ml,用此染液染出的脂肪滴呈猩红色带橙红色,效果较好。

三、油红O染色法

试剂配制

  1. 油红O贮备液:将油红O 0.5g和无水乙醇100ml倾入三角烧瓶内,轻轻摇动使其尽量溶解,过滤到小口砂塞瓶密封保存备用。
  2. 油红O工作液:取油红O贮备液18ml,加蒸馏水12ml,充分混合后静置10分钟后使用。
  3. 70%的乙醇。
  4. Mayer苏木精。

染色步骤

  1. 新鲜组织低温恒冷切片,切片温度和厚度要求与苏丹Ⅳ法类似。
  2. 切片于70%的乙醇稍洗。
  3. 油红O工作液浸染(加盖)5~10分钟。
  4. 70%的乙醇稍洗去多余染液。
  5. 蒸馏水稍洗。
  6. Mayer苏木精浅染胞核2分钟。
  7. 水洗10分钟,再用蒸馏水稍洗。
  8. 用滤纸把组织周围水分抹干。
  9. 甘油明胶封盖。

结果

中性脂肪呈深橙红色,胞核呈蓝色。

注意事项

  1. 油红O又名苏丹红5B,为多偶氮染料,它比苏丹Ⅳ又多两个甲基,由于它所染的颜色较深,呈深橙红色,故为较好的中性脂肪染料。
  2. 原法用异丙醇配制油红O,改用无水乙醇代替异丙醇更加简单。
  3. 油红O工作液只能当天使用,用后不能保存。
  4. 也可用Harris苏木精染核,但水洗后需用1%的盐酸乙醇分化,使脂滴和胞核清晰。
  5. 其他可参考苏丹Ⅳ法的注意事项。对于细胞样品,处理结束后,PBS洗3次;加入10%多聚甲醛固定30min,PBS洗三次;油红O染色30min(避光),PBS洗三次,观察;加异丙醇,转移后定量。油红O工作液的配置是油红O储存液(300mg油红O粉末溶于100mL99%异丙醇中,室温保存并避光),按照油红O储存液与超纯水(3:2)稀释,滤膜过滤,现用现配,并注意避光。油红O溶液是饱和溶液,在室温放置一段时间或4℃保存时,可能会有少量沉淀析出,同时,为了避免异丙醇的挥发,需要现用现配。染液体积均匀覆盖到细胞即可,可以适当延长染色时间,但不宜超过60min。

四、苏丹Ⅲ染色法

试剂配制

  1. 苏丹Ⅲ染液配法:将0.15克苏丹Ⅲ溶解于100ml70%酒精或纯丙酮和70%酒精混合液中(各50ml),临用时过滤,所得滤液即为饱和浓度。浸染时,容器必须盖好,否则酒精或丙酮挥发,染料沉淀。
  2. 甘油明胶配制:明胶40g,蒸馏水210ml,甘油250ml,石碳酸结晶5ml。先将明胶浸入蒸馏水中2小时或更长时间,然后加甘油和石碳酸,加热15分钟,摇搅直至混合液均匀为止。

染色步骤

  1. 固定于10%甲醛的组织。
  2. 水洗后采用冰冻或石蜡切片。
  3. 经蒸馏水后,浸染于Harris苏木素或明矾苏木素中淡染1 - 2分钟。
  4. 自来水冲洗。
  5. 水洗后,移入70%酒精5秒钟。
  6. 投入苏丹Ⅲ染液中约30分钟或更长时间,置于56℃温箱中。
  7. 在70%酒精中洗涤5 - 10秒钟。
  8. 洗于蒸馏水中,然后将切片移于载玻片上。
  9. 将切片周围的水分小心擦掉。
  10. 甘油明胶封固。

结果

脂肪呈橙红色或鲜红色或黑色,胆脂素呈淡红色,脂肪酸不着色,细胞核呈蓝色。

五、高碘酸 - 无色品红法(PAS法)

试剂配制

  1. 0.5%的高碘酸。
  2. 1mol/L盐酸。
  3. 无色品红液:碱性品红1g,蒸馏水200ml,1mol/L盐酸20ml,偏重亚硫酸钠1~1.5g,活性炭2g。配制方法为取一个500ml的洁净三角烧瓶盛蒸馏水200ml,在电炉上煮沸后,加入碱性品红,搅拌使其溶解,冷却至50℃左右,加入盐酸和偏重亚硫酸钠,继续搅拌,待溶液冷却至室温后,加入活性炭,搅拌1分钟,过滤,滤液即为无色品红液。

染色步骤(此处未详细提及,可进一步查阅资料完善)

结果(此处未详细提及,可进一步查阅资料完善)

注意事项(此处未详细提及,可进一步查阅资料完善)

六、锇酸染色法

锇酸染色法也是一种用于脂肪染色的方法。在相关研究中,取新鲜脂肪组织及肝组织,以锇酸浸染组织块后进行石蜡包埋切片及眦复染。结果显示切片脂肪滴呈黑色。锇酸染色和碳蜡包埋技术在脂肪染色中,具有冰冻切片和石蜡切片的优点,弥补了常规冰冻切片脂肪染色的缺点和局限性,在病理检验及科研中具有一定应用价值。不过该方法也有其自身的特点和注意事项,例如锇酸具有毒性,操作时需要严格遵守安全规范等。

综上所述,不同的脂肪切片染色方法各有优缺点和适用范围。在实际应用中,需要根据研究目的、组织类型、实验条件等因素选择合适的染色方法,以获得准确、清晰的染色结果,为医学和生物学研究提供有力的支持。

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